Affiliation:
1. Universidad de la República
Abstract
Se evaluó la calidad y capacidad fecundante in vitro(FIV) de semen de un banco de bovinos Criollo Uruguayo. Semen de 8 toros, diluido en Triladyl® (T) y Andromed® (A) (con/sin yema de huevo), se evaluó por CASA: concentración, motilidad, cinética, morfología y test hiposmótico. Alas 2 horas se repitió motilidad ycinética. Se aplicó el test T para tiempo y diluyentes y percentiles para categorizar los 16 grupos. Cuatrocientos cuatro complejos ovocito células del cúmulo (COC) de calidad A, obtenidos de un frigorífico, fueron madurados en TCMcon 5 % de suero fetal bovino (SFB) y hormonas, en gotas, cubiertas con aceite mineral a 38.5 ºC, 5 %CO2 y humedad saturada; tras 22h se inseminaron con semen de 4 toros diluidos en A y T, seleccionado por centrifugación en gradientes de Percoll® (90/45 %), en Talp Sperm. Se formaron gotas con Talp Fert con 2x106spz/ml y se coincubaron con los COC por 18h. Los presuntos cigotos se denudaron y cultivaron en CR1aa con SFB (5 %). Se evaluó clivaje (48h) y desarrollo embrionario (DE) al día 7. Los resultados de la FIV se analizaron mediante Chi cuadrado. No hubo diferencias significativas en el clivaje (A:143/207; T:128/197) ni en el DE (33.33 y 34.52 % respectivamente) entre diluyentes. No hubo diferencias significativas enclivaje entre el semen del toro 1026 (73/109) y 9701 (68/101), ni entre ellos respecto a los toros 5834 (77/102) y 3733 (53/92), el 5834 tuvo mayor clivaje respecto al 3733 (p=0.008). No hubo diferencias significativas en DE entre toros. Salvo el toro 0850 (A y T), los demás resultaron aceptables y fueron fértiles en la prueba in vitro. Este trabajo estudió la calidad del semen del banco y su capacidad fertilizantein vitro, resultando adecuados ambos diluyentes. Salvo las muestras de semen deun toro, el resto podrían ser usadas para inseminación artificial u otras biotecnologías.
Publisher
Asociación Latinoamericana de Producción Animal (ALPA)
Reference54 articles.
1. Aguilar, G.F., K.K. Amaro, G. Hernández, F. Fernández Reyes. 2013. Evaluación de dos diluyentes para la conservación de semen ovino: yema de huevo, lecitina de soya. División: Ciencias Biológicas y de la Salud, Departamento de Producción Agrícola y Animal. Universidad Autónoma Metropolitana. Unidad Xochimilco. México.
2. Aires, V. A., K-D. Hinsch, F. Mueller-Schloesser, K. Bogner, S. Mueller-Schloesser and E. Hinsch. 2003. In vitro and in vivo comparison of egg yolk-based and soybean lecithinbased extenders for cryopreservation of bovine semen. Theriogenology 60(2): 269-79. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(02)01369-9
3. Amann, R. P., and D. Walberski. 2014. Computer-assited sperm analysis (CASA): Capabilities and potential developments. Theriogenology 81: 5-17. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.09.004
4. Amann, R. P., and J. M. DeJarnette. 2012. Impact of genomic selection of AI dairy sires on their likely utilization and methods to estimate fertility: A paradigm shift. Review. Theriogenology 77:795– 817. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.09.002
5. Amann, R. P., and S. P. S. Gill. 2000. Correlation or diagnosis and prediction? Proc. 14th ICAR, Stockholm 1, 69 (2: 3).