Abstract
Особый интерес научного сообщества привлекает терапевтический и иммуномодулирующий потенциал мультипотентных мезенхимальных стволовых клетках (ММСК) костного мозга. В связи с этим поиск эффективной методики выращивания клеток данного типа является актуальной задачей для экспериментальной медицины. Целью исследования стала оптимизация стандартных протоколов субкультивирования мышиных ММСК, получаемых из первичной культуры костного мозга. Материалы и методы. Оценивался выход клеток при пассировании трипсином или аккутазой с помощью различных методик спустя 14 дней культивирования суспензий костного мозга мышей линии ICR в посевных концентрациях первичной культуры: 10, 15-20 и 30 млн клеток на 25 см2 . Результаты. С помощью обработки в течение 15 мин 2 мл трипсина или 2 мл аккутазы удалось спассировать до 300 тыс адгезирующих и делящихся клеток при исходном посеве в 10 млн. По той же методике обработки удалось снять в 1,3–1,5 раза меньше клеток с посева в 15–20 млн за 15 мин и 30 млн клеток за 30 мин, а также культура значительно медленнее росла в 1-м пассаже Заключение. Посевная плотность первичной культуры костного мозга в 10 млн клеток на 25 см2 является оптимальной для получения адгезивной культуры мезенхимальных стволовых клеток мышей линии ICR. Субкультивирование с 2 мл трипсина или 2 мл аккутазы в течение 15 мин наиболее эффективно для получения первого пассажа.
The therapeutic and immunomodulatory potential of bone marrow multipotent mesenchymal stem cells (BMSCs) attracts special interest of the scientific community. In this regard, the search for an effective cell culture technique is an urgent task for experimental medicine. The aim of the study was to optimize the standard protocols for subculturing murine MMSCs obtained from primary bone marrow culture. Methods. The cell yield was evaluated by trypsin and accutase passaging using different methods after 14 days of culturing bone marrow suspensions of ICR line mice in seed concentrations of primary culture: 10, 15-20, 30 million cells per 25 cm2 . Results. With the help of treatment for 15 min with 2 ml of trypsin and 2 ml of accutase, it was possible to save up to 300 thousand adherent and dividing cells with an initial inoculation of 10 million. Using the same method, 30–35% fewer cells were removed from inoculation of treatment in 15–20 in 15 min and 30 million cells in 30 min. Conclusion. Seeding density of primary bone marrow culture of 10 million cells per 25 cm2 is optimal for obtaining an adherent culture of mesenchymal stem cells of mice of ICR line. Subculturing with 2 ml of trypsin and 2 ml of accutase for 15 min is most effective for obtaining the first passage.
Publisher
Cifra Ltd - Russian Agency for Digital Standardization (RADS)
Reference10 articles.
1. Афанасьева Ф.М., Ниаури Д.А., Виноградова Т.И., Коган И.Ю., Тапильская Н.И., Джемлиханова Л.Х., Рыжов Ю.Р., Гзгзян А.М. Применение мезенхимных стромальных клеток в комплексной терапии экспериментального туберкулеза половых органов. Журнал акушерства и женских болезней. 2022; 71(2): 29–38. DOI: 10.17816/JOWD84506
2. Ветошкин К.А., Исаева Н.В., Минаева Н.В., Зорина Н.А., Бутолина М.А. Опыт стандартизации получения препарата, содержащего мезенхимальные стволовые клетки, на основе иммунофенотипического анализа. Клеточные технологии – практическому здравоохранению. Материалы VII Межрегиональной научно-практической конференции. 2018; 65–70. Режим доступа: https://celltechnologies.ru/Konferenciya-2021/Konferenciya-2018 Дата обращения: 07.07.2023
3. Родина А.В., Сёмочкина Ю.П., Высоцкая О.В., Глухов А.И., Москалёва Е.Ю. Особенности действия γ-излучения на мезенхимальные стволовые клетки жировой ткани после длительного культивирования. Радиационная биология. Радиоэкология. 2019; 59(3): 243–254. DOI: 10.1134/S0869803119020127
4. Вялкина М.В., Алчинова И.Б., Яковенко Е.Н., Медведева Ю.С., Сабурина И.Н., Карганов М.Ю. Долговременные эффекты стволовых клеток на облученных мышей. Биомедицина. 2017; 4: 18–33.
5. Осипов Б.Б. Трансплантация мезенхимальных стволовых клеток в комбинации с озонотерапией в лечении экспериментального цирроза печени. Вестник Витебского государственного медицинского университета. 2018; 17(1): 81–90.