Affiliation:
1. Витебский государственный медицинский университет
Abstract
Цель исследования. Уточнить природу бета-лактамазной активности ротовой жидкости, оценить вклад в нее эндогенных факторов макроорганизма.
Объекты и методы исследования. Образцы слюны пациентов с гнойно-воспалительными заболеваниями ротовой полости. Были выполнены следующие эксперименты: 1) фракционирование образцов слюны (n = 4) препаративным диск-электрофорезом; 2) обработка образцов слюны с наиболее выраженной бета-лактамазной активностью (n = 10) взвесью гранул голубой сефарозы; 3) ингибирование бета-лактамазной активности образцов слюны (n = 16) раствором тазобактама (5 мг/мл). Определение уровня бета-лактамазной активности слюны выполнялось путем спектрофотометрической регистрации уровня распада нитроцефина.
Результаты исследования и их обсуждение. Фракционирование образцов слюны с изолированным определением бета-лактамазной активности белковых фракций показало, что максимум активности соответствовал белкам с очень низкой концентрацией и молекулярной массой, приблизительно равной 30–35 кДа. Обработка образцов слюны взвесью гранул голубой сефарозы показала, что в 4 пробах из 10 бета-лактамазная активность практически не изменилась, а в оставшихся 6 – снизилась в среднем на 19,9 Ѓ} 4,4%. Ингибирование бета-лактамазной активности проб слюны раствором тазобактама привело к снижению указанной активности в среднем на 83,2 Ѓ} 21,6%.
Заключение. Таким образом, бета-лактамазная активность слюны обусловлена на ≥ 80% бета-лактамазами бактерий (преимущественно – класса А), и на ≤ 20% – эндогенными факторами человеческого организма (в первую очередь – человеческим сывороточным альбумином). В большинстве проб слюны бета-лактамазная активность обусловлена исключительно присутствием бактериальных бета-лактамаз класса А, ввиду чего таким пациентам рекомендовано использование ингибитор-защищенных антибиотиков бета-лактамного ряда.
Publisher
The Public Association of Belorussian Stomatologists
Reference21 articles.
1. Elisabeth M., Clara D., Gary C. [et al.] Bacterial diversity in the oral cavity of ten healthy individuals. ISME J., 2010, vol. 4 (8), pp. 962–974, doi: 10.1038/ismej.2010.30
2. Guobis Ž. , Kareivienė V., Basevičienė N. [et al.] Microflora of the oral cavity in patients with xerostomia. Medicina (Kaunas), 2011, vol. 47 (12), 646–651, PMID: 22370462
3. Tets V.V., Tets G.V., Vikina D.S. [et al.] Unknown pathogens from the human oral microflora of interest for otorhinolaryngology. Vestn. Otorinolaringol., 2014, vol. 1, pp. 33–36, PMID: 24577029
4. Karbach J., Callaway A.S., Willershausen B. [et al.] Multiple resistance to betalactam antibiotics, azithromycin or moxifloxacin in implant associated bacteria. Clin. Lab., 2013, vol. 59 (3–4), pp. 381–387, doi: 10.7754/Clin Prieto J., Calvo A. Microbiological basis of oral infections and sensitivity to antibiotics. Med Oral Patol Oral Cir Bucal., 2004, vol. 9, Suppl. 15–8, pp. 11–14, PMID: 15580129
5. Prieto-Prieto J., Calvo A. Microbiological basis of oral infections and sensitivity to antibiotics. Med Oral Patol Oral Cir Bucal., 2004, vol. 9, Suppl. 15–8, pp. 11–14, PMID: 15580129